| 常見問題 FAQ |
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LCM 細胞擷取服務:
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| 1. |
Q. |
冷凍組織切片的厚度大約要多少,才能在 LCM 系統中被擷取? |
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A. |
7~8 μm。
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| 2. |
Q. |
已切好的組織切片 Slide 該如何保存才可確保 RNA 沒有被分解掉,以及能讓組織容易被 LCM 擷取? |
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A. |
–80 ℃ 保存。
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| 3. |
Q. |
組織切片在染色、脫水後進行 LCM 操作,其操作時間的安全範圍(即 RNA 不被分解的安全範圍)? |
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A. |
盡量在一小時之內結束,但 1~2 小時都屬安全範圍。
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| 4. |
Q. |
LCM 後的 RNA 的品質為何可進行後續晶片實驗? |
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A. |
RNA 品質應達到以 NanoDrop OD 260/280 ratio 為 1.8~2.1 及 Bioanalyzer 2100 (RIN > 6) 作 RNA 完整度標準,如果沒有的話可再確定下列幾點:
1. 全程是否 RNase-free 操作
2. 新鮮的檢體在取下後如無法馬上進行 OCT 包埋,也應在 15 分鐘內將其保存在 -40 ℃ 以下的低溫環境中
3. LCM 操作時間在 1~2 hrs 內
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| 5. |
Q. |
LCM 要擷取多少細胞才能進行後續晶片實驗? |
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A. |
依照細胞 RNA quality 決定,約需 2000 ~ 10000 cells。
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| 6. |
Q. |
需要準備多少 slides? |
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A. |
主要還是依照標的細胞的 quality 及所擷取的細胞數目準備 10~20 片。
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| 高通量 Q-PCR 服務: |
| 1. |
Q. |
送樣後多久可以拿到報告? |
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A. |
如從樣品抽取核酸開始,並包含引子設計,報告可以在送樣後約四個禮拜內收到;報告取得時間會因樣品數的多寡及
樣品 QC 後的回覆時間快慢而有所增減。
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| 2. |
Q. |
自備的引子或是引子序列可以進行 QPCR 實驗? |
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A. |
如客戶有自備的引子或是引子序列,威健會先幫您進行引子測試,以確認引子是否適合於進行 QPCR 實驗。
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| 3. |
Q. |
委託威健進行 QPCR 所設計的引子序列最後會給客戶嗎? |
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A. |
委託威健設計的引子序列最後會在報告中列出。
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| 4. |
Q. |
委託威健所設計的引子在進行 QPCR 實驗後是否可以取回? |
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A. |
您當然可以取回引子;您可以先通知當區的威健業務同仁說要取回引子,之後便會寄回給客戶。
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| 5. |
Q. |
是否可以進行絕對定量的 QPCR 實驗? |
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A. |
只要能提供足量的標準品 (已知 copy number 與濃度)給威建,便可為您安排實驗。
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SNPs QPCR 服務:
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| 1. |
Q. |
溶於 TE buffer 的 DNA sample 是否可進行實驗? |
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A. |
原則希望客戶的 sample DNA 皆溶於水中,因 OpeAarray 是在 88 nl 的小體積下進行 PCR,若有 EDTA 存在下可能會干擾 PCR 而影響分型的結果,如果客戶僅有 TE buffer 的 DNA sample,仍會初步以 QPCR ATP2B4 gene 先行 QC 判斷是否可行,但最後的 SNP 分型的準確度可能較低。
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| 2. |
Q. |
約有多少比例的 SNP 可被判出 |
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A. |
約有 95% 可被判斷分型。
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| 3. |
Q. |
可否臨時追加樣品進行分析 |
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A. |
因 OpenArray plate 有最小訂購單位,每次採購都有相對的 sample 數量,所以無法接受臨時追加樣品。
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| 4. |
Q. |
多久可拿到報告 |
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A. |
ABI 的 OpenArray plate 到貨後約需兩星期時間即可完成分析報告。
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基因晶片服務:
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核酸萃取
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| 1. |
Q. |
威健有 RNA, DNA, miRNA Isolation 的服務嗎? |
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A. |
有,但都必需接續主要分析實驗服務,包含 Microarray、QPCR、NGS 等服務。
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| 2. |
Q. |
該如何準備 sample ? |
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A. |
請參考 DNA 檢體收集建議流程及 RNA 檢體收集建議流程。
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| 3. |
Q. |
如何將 sample 交給威健? |
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A. |
您可以電話通知威健業務,針對您的檢體狀況討論送件方式。客戶若已準備好 sample,我們會有專人前去收檢。
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| 4. |
Q. |
一般進行 RNA QC 方法有哪些﹖ |
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A. |
一般 RNA QC 方法有下列兩種方法:
| a. |
OD260/280 比例,一個純度高的 RNA 樣品比值應落在 1.9-2.1 之間。
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| b. |
若樣品為 total RNA ,則可以採 1% denaturing agarose gel 電泳分析 28S rRNA 及 18S rRNA 的長度分布(如下圖),其中 28S rRNA 的位置相當於 ~4.5 kb,18S rRNA 的位置相當於 ~1.9 kb。而除了 28S 及 18S rRNA 有清楚的 band 之外,膠體的電泳其他區域應沒有其他肉眼可見的 rRNA 片段分布。
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| 5. |
Q. |
威健 RNA QC 的方法﹖ |
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A. |
目前威健採用 Agilent 2100 Bioanalyzer 分析 total RNA 樣品,其原理是利用毛細管電泳來分離 RNA,此方法的靈敏度及準確度皆較 OD260/280 比例及 agarose 膠體電泳為佳。
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| 6. |
Q. |
RIN 值的意義為何? |
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A. |
RNA integrity number (RIN) 為 RNA 完整度指標是由 Agilent Bioanalyzer 2100 軟體根據多項參數所計算出的數值,用以判斷 total RNA 的完整度,RIN 值由 0~10,數值越高表示 total RNA 的完整度越好,反之數值越低表示 RNA degrade 情形越嚴重。
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CGH Microarrary
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| 1. |
Q. |
對照組用什麼比較好? |
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A. |
對照組需要依照實驗目的與設計選用,選擇建議請參考樣品條件說明。另外,一組實驗建議採用單一正常個體,而非多數正常個體等量混合為對照,因為等量混合容易因各對照組 DNA 製備差異造成的變異雜訊及個體間變異位置差異,而造成該處 copy number 無法正確判定。
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| 2. |
Q. |
我提供的 DNA 很多,為什麼威健定量後很少? |
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A. |
有這種狀況可能是因為 1. 客戶定量儀器的誤差:威健使用 NanoDrop 定量,並以 Bioanalyzer 2100 做 QC 並 double confirm,此二種儀器皆有定期校正,誤差機率極低。建議客戶端再行儀器校驗,或使用多種工具 confirm。2. aCGH 實驗需去除 RNA,如客戶未加 RNase 去除 RNA,定量結果就會有誤差,若有此種狀況,威健可代為 clean-up,但之後定量結果必然較低。
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| 3. |
Q. |
aCGH 結果要怎麼分析比較好?一樣是篩選兩倍差異的點嗎? |
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A. |
aCGH 結果分析非常依賴圖形化工具,一般會將各個偵測點排列在 chromosome physical location 上,以便查知是否為連續段落變異。威健出具的報告,己利用圖形化工具顯示變異位置,但變異位置過多時無法完全展示,若有此種狀況可參考 cytoreport 以得知變異位置分布情況。
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ChIP-on-chip Microarrary
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| 1. |
Q. |
前面免疫沉澱的步驟頗為困難,可否代為操作? |
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A. |
免疫沉澱的步驟非常關鍵,且因各客戶所用抗體等條件各異,難以規格化,由原委託之實驗自行控制為宜。
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| 2. |
Q. |
樣品量很少很難 QC,怎麼辦才好? |
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A. |
樣品量太少可先用 WGA kit 放大,如果放大效果依舊不理想(對照於平行操作之 input 樣品),即表示此樣品太少或不佳,則需考慮重做與否。建議在進行 clean-up 步驟時採用 column based kit 而非沉澱法,雖然檢體會 loss 但可避免雜質的干擾,以利後續實驗準確度。
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Gene Expression Microarray
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| 1. |
Q. |
Gene Expression 分析實驗需要多少時間? |
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A. |
一般而言,Gene Expression 分析實驗約需 3 周時間。但詳細狀況依樣品量以及分析方式而有所不同,請與威健業務聯繫確認。
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| 2. |
Q. |
如樣品 RNA 總量不足 5 µg 還可以進行實驗嗎? |
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A. |
如樣品 RNA 28S/18S ratio 及 RIN (RNA Integrity Number) 達到 QC 標準,可與實驗室討論評估是否能進行後續實驗。
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| 3. |
Q. |
雙光實驗和單光實驗可以彼此相互分析嗎? |
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A. |
由於實驗模式不同,所以這兩種實驗結果無法相互比較。
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| 4. |
Q. |
為甚麼要先進行 RNA QC? |
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A. |
因為 microarray 結果的準確度和RNA的品質有相當大的關係,若 RNA 品質不佳,則結果的可信度則存疑。因此威健對 sample 都會進行 QC,確保實驗的準確度。
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Methylation Microarray
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| 1. |
Q. |
解析度如何? |
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A. |
Agilent 目錄晶片是以 CpG island 位置向左右各延伸 95 bp 範圍區間內進行設計,每個探針平均約間隔 100 bp。其偵測用探針數量約有,平均每 Island 約有 7 個探針偵測,此即其解析度。
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| 2. |
Q. |
DNA 需求量是否可以降低? |
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A. |
由於甲基化 DNA 一般比例不高,且又需以抗體做免疫沉澱,能得到的甲基化 DNA 不多,所以才要求 DNA 總量大於 10 ug 。其他因程序考量而要求增加的部分,可依照客戶檢體總量調整。但為免耽誤實驗進展,請盡量提供足量 DNA。
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| 3. |
Q. |
後續之資料分析如何進行比較好? |
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A. |
Methylation Microarray 資料分析目前仍無普遍標準,目前威健使用 Agilent Genomic Workbench 進行資料分析,發表 paper 時較有依據,不易引發爭議。另外,建議您在所偵測出的位點,挑選局部具代表性或預定於 paper 中述及者,進行 bisulfite sequencing 驗證。此外,可以使用 Agilent Genomic Workbench 以整體 genome view 的觀點檢視 chromosome 的分佈是否呈現 cluster 現象。
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| 4. |
Q. |
偽陽性率與偽陰性率如何? |
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A. |
Microarray 實驗本身極少偽陽或偽陰性結果,但由於此實驗前半段為抗體免疫沉澱,實驗正確性與抗體特異性相關,因此,Methylation Microarray 可能有偽陽或偽陰性結果,而目前此比率尚無實際數據。因此,威健建議在判定 methylation 之資料時,採用連續的 3 個 probe 皆有顯著差異者,才認定為 methylation 位點。
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microRNA Microarray
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| 1. |
Q. |
如何計價? |
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A. |
由於威健所提供的 miRNA 分析服務具有相當程度的客製化,我們必須依照客戶所提供的樣品形式、數量、實驗設計比較等資訊為客戶量身打造最適合且合理的報價。想了解價格可來電 02-66160001 或是 e-mail:service@welgene.com.tw 將會有專人為您做說明。
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| 2. |
Q. |
microRNA Microarray 分析實驗約需多久? |
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A. |
一般而言,microRNA Microarray 分析實驗約需 5 周時間。但詳細狀況依樣品量以及分析方式而有所不同,請與威健業務聯繫確認。
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| 3. |
Q. |
RNA 純化方法建議有四種,那一種最好? |
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A. |
一般來說 TRIZOL Reagent 純化方式是最經濟且方便,也是目前應用最多的方法。不管何種純化方式都不會影響結果的準確性與再現性,但為了實驗品質的可靠與一致,建議客戶凡是在同一實驗設計比較之樣品,一律採用相同方式進行RNA 純化。
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| 4. |
Q. |
客戶可以的到什麼樣的分析結果? |
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A. |
威健會根據樣品的數量以及實驗設計為客戶進行分析比較,同時篩選出有意義或是顯著變化的 miRNA 以供客戶做參考。
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Custom Microarray
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| 1. |
Q. |
客制化晶片設計需時多久,我可以拿到晶片: |
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A. |
一般探針設計需時 1-2 周,晶片確認訂出後約 3~4 周,即可收到晶片。
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| 2. |
Q. |
如何確認 Agilent 目前的制式晶片種類 (catalog microarray)? |
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A. |
Agilent 目前除了提供人類、大鼠、小鼠的全基因組基片外,另也提供一系列的模式物種 Microarray (最新資訊,請連結 gene expression,ChIp-on-chip, aCGH),如果研究人員在上述資訊中無法尋得欲分析物種之晶片,則請洽客服、或當區的服務工程師,確認進行客製化晶片的設計。
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| 3. |
Q. |
我最近經由 Next Generation Sequencing,得到一物種的 transcriptome 序列,請問如何利用這些資訊來設計該物種的客製化晶片? |
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A. |
只要您將序列及註解資訊整理成 FASTA 格式,提供給我們即可。
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| 4. |
Q. |
我的實驗組數不多,請問可以只訂一片晶片嗎? |
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A. |
Agilent 的靈活噴墨晶片製程 (SurePrint platform),可自由製造您專屬的研究用晶片,一片也可以幫您客制合成,且不需額外的探針設計費。
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